MCE 国际站:
Erlotinib Hydrochloride品牌:MedChemExpress (MCE)
货号:HY-12008
CAS:183319-69-9
中文名称:盐酸埃罗替尼
Synonyms:盐酸埃罗替尼
CP-358774 hydrochloride
NSC 718781 hydrochloride
OSI-774 hydrochloride
纯度:99.93%
存储条件:4°C,密封保存,远离潮湿 *溶剂中:-80°C,6个月
-20°C,1个月(密封保存,远离潮湿)
运输条件:美国大陆的室温
其他地方可能有所不同。
产品活性:Erlotinib Hydrochloride (CP-358774 Hydrochloride) 抑制 EGFR 激酶的 IC50 为 2 nM。Erlotinib (Hydrochloride) 是一种点击化学试剂。它含有 Alkyne 基团,可以和含有 Azide 基团的分子发生铜催化的叠氮-炔环加成反应 (CuAAc)。
生物活性:Erlotinib Hydrochloride (CP-358774 Hydrochloride) 抑制纯化的 EGFR 激酶,IC50 为 2 nM。 IC50 和目标:IC50:2 nM (EGFR)[1] 体外: Erlotinib Hydrochloride (CP-358774 Hydrochloride) 也是一种有效的EGFR 重组细胞内(激酶)结构域的抑制剂,IC50 为 1 nM。 Erlotinib 强烈抑制 DiFi 细胞的增殖,在为期 8 天的增殖试验中,IC50 为 100 nM[1]。与单独使用任何一种药物相比,B-DIM 和 Erlotinib (2 μM) 的组合导致 BxPC-3 细胞中集落形成的显着抑制。与单独使用任何一种药物的细胞凋亡作用相比,B-DIM 和 Erlotinib (2 μM) 的组合导致仅在 BxPC-3 细胞中显着诱导细胞凋亡[2]。 体内:口服厄洛替尼 (5 mg/kg) 后 AUC0-inf 与对照组相比有 1.49 倍的统计显着差异Bcrp1/Mdr1a/1b-/- 和 WT 小鼠(分别为 7,419±1,720 和 4,957±1,735 ng*h/mL,P=0.01)[3]。厄洛替尼(10 毫克/千克/天,或 20 毫克/千克/天)对博来霉素 (BLM) 处理的大鼠的给药显示,在宏观发现、肺重量、组织病理学评分(肺损伤密度)等指标中,肺损伤没有恶化和肺纤维化评分)和肺羟脯氨酸 (HyP) 水平。结果表明厄洛替尼对 BLM 引起的大鼠肺损伤没有任何加重作用[4]。
体外:盐酸厄洛替尼 (CP-358774 盐酸盐) 也是 EGFR 重组胞内 (激酶) 结构域的强效抑制剂,IC50 为 1 nM。8 天增殖试验中,厄洛替尼强烈抑制 DiFi 细胞的增殖,IC50 为 100 nM[1]。与单独使用任一药物相比,B-DIM 和厄洛替尼 (2 μM) 的组合可显著抑制 BxPC-3 细胞中的集落形成。与单独使用任一药物的凋亡作用相比,B-DIM 和厄洛替尼 (2 μM) 的组合仅在 BxPC-3 细胞中导致显著的凋亡诱导[2]。MCE 尚未独立证实这些方法的准确性。它们仅供参考。
体内:口服厄洛替尼(5 mg/kg)后,Bcrp1/Mdr1a/1b-/-小鼠与WT小鼠的AUC0-inf 分别为7,419±1,720 vs 4,957±1,735 ng*h/mL,P=0.01,有1.49倍的统计学差异[3]。给接受博来霉素 (BLM) 治疗的大鼠注射厄洛替尼(10 mg/kg/天或20 mg/kg/天),未见肺损伤在肉眼可见的发现、肺重、组织病理学评分(肺病变密度和肺纤维化评分)和肺羟脯氨酸 (HyP) 水平等指标中加剧。结果提示,厄洛替尼对BLM 引起的大鼠肺损伤没有加剧作用[4]。MCE 尚未独立证实这些方法的准确性。它们仅供参考。
动物实验:小鼠[3] Bcrp1/Mdr1a/1b-/- 和 WT 小鼠经口服或腹腔注射 5 mg/kg 厄洛替尼。选择腹腔注射给药是因为假设药物吸收良好且生物利用度完全。分三个系列从侧尾静脉尖端取样。在第一个系列中,在注射后 15 分钟和 0.5、1.5、5 和 10 小时采集全血样本。根据初始组的结果,后续两个系列的采样时间调整为注射后 5 和 15 分钟以及 0.5、1.5、4 和 8 小时。采集后,立即离心血样,并将血浆储存在 -20°C 下,直到进行高效液相色谱分析。大鼠[4] 使用七周龄雄性 Crl:CD (SD) 大鼠 (244-297 克)。动物通过管饲法口服盐酸厄洛替尼(10 mg/kg 和 20 mg/kg)。MCE 尚未独立证实这些方法的准确性。仅供参考。
细胞实验:为了测试用 B-DIM、厄洛替尼或组合处理的细胞的活力,将 BxPC-3 和 MIAPaCa 细胞 (每孔 3,000-5,000 个) 接种在 96 孔板中并在 37°C 下孵育过夜。首先测试 B-DIM (10-50 µM) 和厄洛替尼 (1-5 µM) 的浓度范围。根据初步结果,为所有测定选择 B-DIM (20 µM) 和厄洛替尼 (2 µM) 的浓度。通过标准 MTT 测定法在 72 小时后确定 B-DIM (20 µM)、厄洛替尼 (2 µM) 和组合对 BxPC-3 和 MIAPaCa 细胞的影响,并重复三次。通过 Tecan 微孔板荧光计在 595 nm 处测量颜色强度。DMSO 处理的细胞被视为未处理的对照,并指定 100% 的值。除上述试验外,我们还进行了克隆形成试验以评估治疗效果[2]。MCE 尚未独立证实这些方法的准确性。它们仅供参考。
激酶实验:激酶反应在 50 μL 50 mM HEPES (pH 7.3) 中进行,其中含有 125 mM NaCl、24 mM MgCl2、0.1 mM Na3VO4、20 μM ATP、1.6 μg/mL EGF 和 15 ng EGFR(从 A431 细胞膜亲和纯化)。加入 DMSO 中的化合物,使 DMSO 最终浓度为 2.5%。加入 ATP 启动磷酸化,在室温下持续 8 分钟,并不断摇动。通过抽吸反应混合物终止激酶反应,并用洗涤缓冲液洗涤 4 次。磷酸化 PGT 的测定方法是,将每孔 50 μL HRP 偶联 PY54 抗磷酸酪氨酸抗体孵育 25 分钟,在封闭缓冲液(PBS 中的 3% BSA 和 0.05% Tween 20)中稀释至 0.2 μg/mL。抽吸去除抗体,用洗涤缓冲液洗涤板 4 次。通过添加 TMB 微孔过氧化物酶底物(每孔 50 μL)来产生结肠测定信号,并通过添加 0.09 M 硫酸(每孔 50 μL)来终止。磷酸酪氨酸通过测量 450 nm 处的吸光度来估算。对照信号通常为 0.6-1.2 个吸光度单位,在没有 AlP、EGFR 或 POT 的孔中基本没有背景,并且与孵育 10 分钟的时间成正比[1]。MCE 尚未独立证实这些方法的准确性。它们仅供参考。
IC50 & Target:EGFR 2 nM (IC50)