MCE 国际站:
Sanguinarine品牌:MedChemExpress (MCE)
货号:HY-N0052
CAS:2447-54-3
中文名称:血根碱
假白屈菜季铵碱
Synonyms:血根碱
Sanguinarin
Sanguinarium
Pseudochelerythrine
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产品活性:Sanguinarine (Sanguinarin) 是一种来源于 Sanguinaria Canadensis 的生物碱,可通过激活活性氧 (ROS) 的产生来刺激细胞凋亡。Sanguinarine 诱导的细胞凋亡与 JNK 和 NF-κB 的活化有关。
生物活性:Sanguinarine (Sanguinarin) 是一种苯并菲啶生物碱,源自 Sanguinaria Canadensis 的根,可通过激活活性氧 (ROS) 的产生来刺激细胞凋亡。 Sanguinarine 诱导的细胞凋亡与 JNK 和 NF-κB 的激活有关。 IC50 和靶标:细胞凋亡[1] 体外:血根碱 (SANG) 诱导的细胞凋亡与 JNK 和 NF-κB 的激活有关信号通路。为了确定血根碱对细胞活力的影响,用不同浓度的血根碱刺激 22B-cFluc 细胞 24 小时,然后进行 CKK-8 测定。 Sanguinarine 治疗以剂量依赖性方式降低 22B 细胞的增殖。同时,测量用不同剂量的血根碱处理的 22B-cFluc 细胞的胞质提取物,以使用 Ac-DEVD-pNA(一种经过验证的 caspase-3 底物)检测细胞 caspase-3 活性。 450 nm 处的吸光度呈剂量依赖性增加,表明 Sanguinarine[1] 刺激 caspase-3 活性增加。 体内:为了评估血根碱 (SANG) 在体内诱导的细胞凋亡,将 22B-cFluc 细胞皮下接种到裸鼠的一侧腹腔,并允许建立异种移植模型.用 10 mg/kg 的 Sanguinarine 静脉内处理小鼠。在处理后 24、48 和 72 小时,在给小鼠腹腔注射 150 mg/kg D-荧光素底物后进行生物发光成像。早在初始处理后 48 小时,Sanguinarine 处理就会引起发光信号的明显增加。在整个实验过程中观察到持续的生物发光成像 (BLI) 强度增加。处理后72小时,收集肿瘤并进行TUNEL染色以评估细胞凋亡。与对照肿瘤相比,用 Sanguinarine 治疗的组表现出明显更多的细胞凋亡,表现为散发的凋亡细胞的绿色信号增加[1]。
体外:血根碱 (SANG) 诱导的细胞凋亡与 JNK 和 NF-κB 信号通路的激活有关。为了确定血根碱对细胞活力的影响,用不同浓度的血根碱刺激 22B-cFluc 细胞 24 小时,然后进行 CKK-8 测定。用血根碱处理会以剂量依赖性方式降低 22B 细胞的增殖。同时,使用 Ac-DEVD-pNA(一种经过验证的 caspase-3 底物)测量用不同剂量血根碱处理的 22B-cFluc 细胞的胞浆提取物以检测细胞 caspase-3 活性。450 nm 处的吸光度以剂量依赖性方式增加,表明血根碱刺激 caspase-3 活性增加[1]。MCE 尚未独立证实这些方法的准确性。它们仅供参考。
体内:为了评估血根碱 (SANG) 在体内诱导的细胞凋亡,将 22B-cFluc 细胞皮下接种到裸鼠的一侧胁腹,建立异种移植模型。给小鼠静脉注射 10 mg/kg 血根碱。在治疗后 24、48 和 72 小时,给小鼠腹腔注射 150 mg/kg D-荧光素底物后进行生物发光成像。血根碱治疗在初次治疗后 48 小时就会引起发光信号明显增加。在整个实验过程中观察到持续的生物发光成像 (BLI) 强度增加。治疗后 72 小时,收集肿瘤并进行 TUNEL 染色以评估细胞凋亡。与对照肿瘤相比,用血根碱治疗的组表现出明显更多的细胞凋亡,由零星凋亡细胞的绿色信号增加表明[1]。 MCE 尚未独立证实这些方法的准确性。它们仅供参考。
动物实验:通过将1×107 个悬浮在PBS中的22B-cFluc细胞注射到裸鼠(n=6)中来制备异种移植肿瘤模型。当肿瘤体积达到约100 mm3时,将血根碱(10 mg/kg)静脉注射到小鼠体内。注射24小时、48小时和72小时后,小鼠单次腹腔注射150 mg/kg D-荧光素,使用Xenogen Lumina II系统进行生物发光成像。使用Living Image软件4.1表示感兴趣区域的信号强度。对于抗肿瘤治疗研究,一组荷瘤小鼠(n=6)在整个实验期间每隔一天静脉注射10 mg/kg血根碱,而对照组小鼠(n=6)仅接受DMSO。计算肿瘤生长测量值[1]。MCE尚未独立证实这些方法的准确性。它们仅供参考。
细胞实验:Sanguinarine 的细胞活力通过 CCK-8 测定法使用细胞计数试剂盒-8 进行测定。简而言之,将 22B-cFluc 细胞接种在 96 孔板中(5×103 个细胞/孔),用不同浓度的 Sanguinarine(0.5 μM、1 μM、2 μM、4 μM)处理 24 小时。然后向每个孔中加入 10 mL CKK-8,放置 4 小时,用微孔板读数仪测量 450 nm 处的吸光度。确定光密度 (OD) 值以反映每个孔中的活细胞群[1]。MCE 尚未独立证实这些方法的准确性。它们仅供参考。
激酶实验:使用 caspase-3 活性检测试剂盒测量 caspase-3 活性。简而言之,收集用不同浓度 Sanguinarine(0.5 μM、1 μM、2 μM、4 μM)或对照 DMSO 处理的细胞,清洗并在冰上用裂解缓冲液裂解 30 分钟。然后以 1,2000 rpm 离心 10 分钟收集上清液。将 Ac-DEVD-pNA(2 mM)添加到每个样品中并在 37°C 下孵育 1 小时。最后使用分光光度计在 405 nm 波长下量化每个样品的光密度 (OD)。p-NA 标准用于校准每个样品的 caspase-3 活性[1]。MCE 尚未独立证实这些方法的准确性。它们仅供参考。
IC50 & Target:Apoptosis[1]