叶绿体的显微观察在分离叶绿体时需要注意什么问题

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1. 不同色素在有机溶剂里的不同溶解度. 2. 注意一定要研碎细胞 3. 吸收纸不能全泡在溶剂里 4. 画线时要注意轻重和宽度 原理为叶绿体在不同溶液中溶解度不同,或者其离心系数和其他细胞器不同.注意加入CaO等促使研磨充分。‍

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针对盐藻: 取培养7d 的藻细胞培养液4500g 离心10min,细胞沉淀重悬在新鲜的生长培养 基中充分洗涤,然后4500g 离心10min,除去一些细胞外的粘稠物.将离心得到的细胞沉淀重悬在冰预冷的15mL 分离缓冲液( 1mol/ L Sorbitol,50mmol/ L Hepes,2mmol/ L EDTA,1mmol/ L MnCl2,1mmol/ LMgCl2,0.5% BSA,0.1 mol/ L DTT,用KOH 调节到pH 7.5) 中.将15mL 重悬细胞液进行冰浴超声波破碎,超声波功率200W,共作用64s,每次作用时间8s,间隔时间9.9s.然后4℃2000g 离心10min,沉淀重悬在3mL 的分离缓冲液中,作为叶绿体粗提液.将叶绿体粗提液加在蔗糖密度梯度( 30%/ 45%/ 59% ,30mL) 上,4℃40000g 离心30min,吸取45%和59% 之间的条带( 约5mL) ,用3 倍体积的清洗缓冲液( 1 mol/ L Sorbitol,25mmol/ L Hepes,用KOH 调节到pH 7.5) 清洗收集物,4℃2000g 离心10min,沉淀即为完整的叶绿体.
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