以下以直径60mm培养皿培养的细胞转染为例
1．在转染前一天把约2.5×105细胞传代到直径60mm的培养皿，待第二天达到约2.5×105细胞（70-80%）时转染。
2．上下倒置数次或vortex混匀脂质体转染试剂，取60微升加到1毫升无血清的DMEM培养液中后，再加5微克的DNA，轻轻混合后在室温中放置15-30分钟。
3．移去细胞培养皿中的含10%血清的DMEM培养液，加入1毫升不含血清的DMEM培养液和步骤3准备的1毫升DNA和脂质混合物，在37oC细胞培养箱内放置4小时后，再加入2毫升含有10%血清的DMEM培养液，5-6小时后，吸除含有LipoFu2008-DNA的培养液，加入适量的新鲜细胞培养液继续培养。
注1：最佳的转染条件，因具体的细胞和培养条件而定，LipoFu2008(毫升):plasmid DNA(微克)的量可在6:1-18:1范围内自行优化转染条件。对于多个孔转染相同数量相同质粒的情况可以把每个孔所需的LipoFu2008和DNA混合物配置在一个离心管内，混匀孵育后可分加到各个孔中。
注2：对于其它培养板或培养器皿，各种试剂的用量可以按照细胞培养面积按比例进行换算，具体参照表1。
注3：室温孵育15-30分钟，可能出现絮状漂浮物，属正常现象，不会影响转染效率。无论是贴壁细胞还是悬浮细胞，LipoFu2008-DNA混合物全部加入后需轻轻混匀。
注4：转染后5-6小时不更换细胞培养液对大多数细胞无明显毒性，更换培养液对一些细胞可以提高转染效率。
对于基因表达，再培养24-48小时后即可检测转染效果；如果用于筛选稳定表达细胞株，则在转染后24-48小时即可加入适当的筛选药物，例如G418等，进行稳定表达细胞株的筛选。
