产品类别：血管内皮细胞的分离
产品编号：VEHY2011P
产品名称：猪血管内皮细胞分离液试剂盒
产品规格：2X200ml/Kit
产品价格：￥1200.00元
本品用于分离猪血管内皮细胞
“XXXX”动物血管内皮细胞分离液实验方法
技术文档编号：TBD0043SOP
【产品规格】2×200ml/Kit
【产品组成】为方便广大用户使用，试剂内容如下：
| 名称 | 产品编号 | 规格 |
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| A | 分离液 1 | | 200ml |
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| B | 分离液 2 | | 200ml |
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| C | 试剂 F（赠品） | F2013TBD | 200ml |
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| D | 样本稀释液（赠品） | 2010C1119 | 200ml |
| E | 清洗液（赠品） | 2010X1118 | 200ml |
| F | 说明书 | | 1 份 |
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【实验前准备】适用仪器:最大离心力可达 1200g 的水平转子离心机
【检验方法】全过程样本、试剂及实验环境均需在 20±2℃的条件下进行。
- 首先制备单细胞悬液，制备方法详见“组织单细胞悬液制备技术（文档编号：
TBD0004SOP）”。
- 取一支离心管，依次小心加入分离液 1、分离液 2（体积比为 3:1，试剂总量与细胞悬液体积比为 2：1。如细胞悬液为 2ml，则先后加入分离液 1：3ml、分离液 2：1ml。试剂总量最少不低于 4ml。），制成梯度界面，各液面分层一定要清晰。
- 用吸管小心吸取细胞悬液加于分离液液面上，500g，离心 25min（注：根据样本量确定离心条件，血液样本量越多，离心力越大，离心时间越长，具体离心条件需客户自行摸索，以达到最佳分离效果）。
- 离心后，此时离心管中由上至下分为六层。第一层为稀释液层。第二层为环状乳白色内皮细胞层（第一层白环及上层 50%分离液 2）。第三层为环状乳白色单个核细胞层（下层50%分离液 2 及第二层白环）。第四层为透明分离液 1 液层。第五层为粒细胞层。第六层为红细胞层。
- 用吸管小心吸取第二层到另一 15ml 离心管中，往所得离心管中加入 10ml 清洗液（产品编号：2010X1118），混匀细胞。
- 用吸管以 5-10ml 清洗液（产品编号：2010X1118）重悬所得细胞。
- 重复 7、8、9，弃上清后以 0.5ml 后续实验所需相应液体重悬细胞。
分离图例：
【差异贴壁法纯化细胞】
（1）用内皮细胞无血清培养基（产品编号：TBD20180011）或内皮细胞完全培养基（产
品编号：TBD20180051）以 1.5-3×10
6 个/ml 的密度重悬细胞，将细胞铺于一次性细胞
板或细胞瓶中，放于 37℃二氧化碳培养箱中进行贴壁培养。
（2）2-4 小时内贴壁的为巨噬细胞前体（俗称为单核细胞）。
（3）10-24 小时内贴壁的单个核细胞为内皮、内皮祖细胞、干细胞。
（4）不贴壁的为淋巴细胞。
注：
- 无血清培养基中不含任何动物成分，为得到更佳培养效果可添加 10%自体血浆或2-8% 经筛选的胎牛血清。
- 完全培养基中含 2-20%胎牛血清（血清具体含量由所培养的目的细胞而定）。
- 由于每种细胞的贴壁时间存在差异可将所得细胞分开已达简单的纯化目的，此法成本相对较低。如需获得高纯度目的细胞则需在使用分离液后选用免疫磁珠阳性或阴
性分选。
【注意事项】- 全过程样本、试剂及实验环境均需在 20±2℃的条件下进行。为获得最佳的实验结果，最好在取样 2h 内进行实验，样品存放时间越长，细胞分离效果越差。样品放置超过 6h 后分离效果更差甚至不能达到分离目的。
- 本实验最好不要使用高聚合材质（如聚苯乙烯）的塑料制品，应使用无静电、低静电离心管及未经碱处理过后的玻璃制品，因为静电作用将导致细胞贴壁、碱处理的玻璃表面会变成毛面，影响细胞分离效果。
- 吸取过多的目的细胞层及分离液层会导致分离液交界处的粒细胞被吸出从而使混杂的粒细胞数量增加。
- 如所实验后细胞得率或活性过低，请联系技术支持以寻求帮助。
【储存条件及有效期】常温保存，有效期 2 年。本品易感染细菌，需无菌条件操作。无菌条件下操作，启
封后置常温保存。如 4℃保存，本分离液易出现白色结晶，影响分离效果。
【参考值（参考范围）】本实验内皮细胞提取率大于 80%。
下表为成年人外周血中各种细胞的数量及比例，用户可适当进行参考。
| 红细胞 | | 白细胞 | | 血小板 |
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| | （4.0-10.0）×109 | |
| 含量（个/L） | （4.0-5.5）×1012 | 中性粒细胞 | 淋巴细胞 | 单核细胞 | （1.0-3.0）×1011 |
| | 50%-70% | 20%-40% | 3%-8% | |
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【可能存在的问题及解决方法】- 由于血液粘度或其他个体差异，可能会造成以下两种情况：a：离心后细胞在上层的血浆层中或稀释液层中，是由于转速过小造成的，用户可适当增加转速，每次增加以 50-100r/min 为基准，直至达到最佳分离效果。
b：离心后细胞在分离液中，是由于转速过大造成的，用户可适当降低转速，每次降低以 50-100r/min 为基准，直至达到最佳分离效果。
本分离液的密度与气压、温度，以及样本差异，客户需要对离心条件进行调整，建议调整时，恒定离心时间，调整转速来达到最佳分离效果。
- 需要分离的样本差异，可能对离心效果有影响：a：需要分离的样本量过大或细胞密度过高，可能造成离心效果不佳。b：需要分离的样本中细胞密度过低，离心后可能造成环状乳白色细胞层模糊不清。客户可适当调整细胞密度，直至达到最佳分离效果。
- 本公司分离液符合国家各项标准，如有红细胞沉降不完全的情况，有可能是样本量过大，离心管中样本的高度过高，在离心过程中样本通过分离液的时间不同造成的。用户可通过适当提高转速，直至达到最佳分离效果。
- 在对转速进行加减的尝试中，离心力最小不得小于 450g，最大不得大于 1200g，离心时间以 20-30min 为准。
【相关实验技术方案】A.流式细胞技术 B.免疫组化技术 C.原位杂交技术 D.PCR 技术
【可能存在的问题及解决方法】1. 由于血液粘度、细胞密度等差异可能造成的问题及解决方案如下表所示：
| 出现情况 | 出现原因 | 建议解决方案 |
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| 离心后目的细胞存在于血浆层或稀释液层 | 转速过小或离心时间过短 | 适当增减转速 |
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| 离心后目的细胞存在于分离液中 | 转速过大或离心时间过长 |
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| 离心后白环层弥散 | 细胞密度过大 | 调整细胞密度 |
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| 离心后白环层太浅或看不见 | 细胞密度过小 |
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- 本分离液分离细胞的原理为密度梯度离心，其密度与温度、大气压等密切相关。不同地区客户可根据当地情况对离心条件进行适当调整。建议对离心条件进行调整时，恒定离心时间，对离心转速进行调整。
- 本分离液依照国际标准，全部使用药用级原料，性能指标与国产同类产品略有不同，可
能出现红细胞沉降不完全的情况，可以适当加大离心转速。
注：在对离心条件进行调整时，离心转速的加减以 50-100g 为基数，直至达到最佳分离效果，离心力最小不得小于 400g，最大不得大于 1200g。离心时间以 20-30min 为准。
