| 兔外周血内皮祖细胞分离液试剂盒 |
| 品牌： ATCC |
| 数量： 大量 |
| 保质期： 6个月 |
| 保存条件： 常温，避光 |
| 兔外周血内皮祖细胞分离液试剂盒使用说明： |
| 以下的操作步骤是最初由Byum.设计的程序的众多改良版本中的一种。此程序的改良是通过运用除去血液中的纤维蛋白或抗凝血剂处理人体血液；这种改良对于其他物种来源血液或者其他组织非常有必要。 |
| 1. 轻轻颠倒瓶子使LSM充分混合 |
| 2. 无菌转移3 mlLSM到15 ml离心管中。 |
| 3. 混合2 ml除纤维蛋白血液或肝素处理血液和2 ml 生理盐水 |
| 4. 仔细的将稀释血液加入3 mlLSM（室温）于15ml离心管中，在血液和LSM中形成一个明显的分层。兔外周血内皮祖细胞分离液试剂盒不要将稀释血液混合入LSM中。 |
| 5. 室温下400g离心15-30分钟，离心可以沉淀红细胞和多核白细胞同时可以再LSM上形成一层单核淋巴细胞，如上图所示。 |
| 6. 吸出淋巴细胞上方2-3mm的血浆。 |
| 7. 吸取淋巴细胞层以及它下面一半的LSM和转移到另外的一个离心管。加入等体积的平衡盐缓冲液至淋巴细胞离心管中，室温离心10分钟，离心速度设定在既不损伤细胞又能沉淀细胞即刻，例如160 - 260 x g（去除LSM和降低血小板的百分比）。 |
| 8. 用平衡盐缓冲液清洗细胞，用适当的培养基重悬细胞。 |
| 兔外周血内皮祖细胞分离液试剂盒方法概述： |
| 分离混合血液白细胞早期的方法，总是伴随红细胞聚集，只轻微影响白细胞。通过离心，红细胞密度增加聚集，同时可以从离心管上部收集白细胞。 |
| 通过使用Ficoll 甲泛影钠溶液离心快速分离方法。稀释的血液在Ficoll甲泛影钠溶液中分层，低速短时离心。红细胞和沉降到管底的粒细胞，和单个核细胞（淋巴细胞）和血小板可以从两个分层之间收集。 |
| 兔外周血内皮祖细胞分离液试剂盒 |
| 品牌： ATCC |
| 数量： 大量 |
| 保质期： 6个月 |
| 保存条件： 常温，避光 |
| 兔外周血内皮祖细胞分离液试剂盒使用说明： |
| 以下的操作步骤是最初由Byum.设计的程序的众多改良版本中的一种。此程序的改良是通过运用除去血液中的纤维蛋白或抗凝血剂处理人体血液；这种改良对于其他物种来源血液或者其他组织非常有必要。 |
| 1. 轻轻颠倒瓶子使LSM充分混合 |
| 2. 无菌转移3 mlLSM到15 ml离心管中。 |
| 3. 混合2 ml除纤维蛋白血液或肝素处理血液和2 ml 生理盐水 |
| 4. 仔细的将稀释血液加入3 mlLSM（室温）于15ml离心管中，在血液和LSM中形成一个明显的分层。兔外周血内皮祖细胞分离液试剂盒不要将稀释血液混合入LSM中。 |
| 5. 室温下400g离心15-30分钟，离心可以沉淀红细胞和多核白细胞同时可以再LSM上形成一层单核淋巴细胞，如上图所示。 |
| 6. 吸出淋巴细胞上方2-3mm的血浆。 |
| 7. 吸取淋巴细胞层以及它下面一半的LSM和转移到另外的一个离心管。加入等体积的平衡盐缓冲液至淋巴细胞离心管中，室温离心10分钟，离心速度设定在既不损伤细胞又能沉淀细胞即刻，例如160 - 260 x g（去除LSM和降低血小板的百分比）。 |
| 8. 用平衡盐缓冲液清洗细胞，用适当的培养基重悬细胞。 |
| 兔外周血内皮祖细胞分离液试剂盒方法概述： |
| 分离混合血液白细胞早期的方法，总是伴随红细胞聚集，只轻微影响白细胞。通过离心，红细胞密度增加聚集，同时可以从离心管上部收集白细胞。 |
| 通过使用Ficoll 甲泛影钠溶液离心快速分离方法。稀释的血液在Ficoll甲泛影钠溶液中分层，低速短时离心。红细胞和沉降到管底的粒细胞，和单个核细胞（淋巴细胞）和血小板可以从两个分层之间收集。 |
| 兔外周血内皮祖细胞分离液试剂盒 |
兔外周血内皮祖细胞分离液试剂盒 | 兔外周血内皮祖细胞分离液试剂盒
| 品牌： ATCC |
品牌： ATCC | 品牌： ATCC
| 数量： 大量 |
数量： 大量 | 数量： 大量
| 保质期： 6个月 |
保质期： 6个月 | 保质期： 6个月
| 保存条件： 常温，避光 |
保存条件： 常温，避光 | 保存条件： 常温，避光
| 兔外周血内皮祖细胞分离液试剂盒使用说明： |
兔外周血内皮祖细胞分离液试剂盒使用说明： | 兔外周血内皮祖细胞分离液试剂盒使用说明：
| 以下的操作步骤是最初由Byum.设计的程序的众多改良版本中的一种。此程序的改良是通过运用除去血液中的纤维蛋白或抗凝血剂处理人体血液；这种改良对于其他物种来源血液或者其他组织非常有必要。 |
以下的操作步骤是最初由Byum.设计的程序的众多改良版本中的一种。此程序的改良是通过运用除去血液中的纤维蛋白或抗凝血剂处理人体血液；这种改良对于其他物种来源血液或者其他组织非常有必要。 | 以下的操作步骤是最初由以下的操作步骤是最初由
Byum.Byum.
设计的程序的众多改良版本中的一种。此程序的改良是通过运用除去血液中的纤维蛋白或抗凝血剂处理人体血液；这种改良对于其他物种来源血液或者其他组织非常有必要。设计的程序的众多改良版本中的一种。此程序的改良是通过运用除去血液中的纤维蛋白或抗凝血剂处理人体血液；这种改良对于其他物种来源血液或者其他组织非常有必要。
| 1. 轻轻颠倒瓶子使LSM充分混合 |
1. 轻轻颠倒瓶子使LSM充分混合 | 1. 轻轻颠倒瓶子使1. 轻轻颠倒瓶子使
LSMLSM
充分混合充分混合
| 2. 无菌转移3 mlLSM到15 ml离心管中。 |
2. 无菌转移3 mlLSM到15 ml离心管中。 | 2. 无菌转移2. 无菌转移
3 mlLSM3 mlLSM
到到
15 ml15 ml
离心管中。离心管中。
| 3. 混合2 ml除纤维蛋白血液或肝素处理血液和2 ml 生理盐水 |
3. 混合2 ml除纤维蛋白血液或肝素处理血液和2 ml 生理盐水 | 3. 混合3. 混合
2 ml2 ml
除纤维蛋白血液或肝素处理血液和除纤维蛋白血液或肝素处理血液和
2 ml 2 ml
生理盐水生理盐水
| 4. 仔细的将稀释血液加入3 mlLSM（室温）于15ml离心管中，在血液和LSM中形成一个明显的分层。兔外周血内皮祖细胞分离液试剂盒不要将稀释血液混合入LSM中。 |
4. 仔细的将稀释血液加入3 mlLSM（室温）于15ml离心管中，在血液和LSM中形成一个明显的分层。兔外周血内皮祖细胞分离液试剂盒不要将稀释血液混合入LSM中。 | 4. 仔细的将稀释血液加入4. 仔细的将稀释血液加入
3 mlLSM3 mlLSM
（室温）于（室温）于
15ml15ml
离心管中，在血液和离心管中，在血液和
LSMLSM
中形成一个明显的分层。兔外周血内皮祖细胞分离液试剂盒不要将稀释血液混合入中形成一个明显的分层。兔外周血内皮祖细胞分离液试剂盒不要将稀释血液混合入
LSMLSM
中。中。
| 5. 室温下400g离心15-30分钟，离心可以沉淀红细胞和多核白细胞同时可以再LSM上形成一层单核淋巴细胞，如上图所示。 |
5. 室温下400g离心15-30分钟，离心可以沉淀红细胞和多核白细胞同时可以再LSM上形成一层单核淋巴细胞，如上图所示。 | 5. 室温下5. 室温下
400g400g
离心离心
15-3015-30
分钟，离心可以沉淀红细胞和多核白细胞同时可以再分钟，离心可以沉淀红细胞和多核白细胞同时可以再
LSMLSM
上形成一层单核淋巴细胞，如上图所示。上形成一层单核淋巴细胞，如上图所示。
| 6. 吸出淋巴细胞上方2-3mm的血浆。 |
6. 吸出淋巴细胞上方2-3mm的血浆。 | 6. 吸出淋巴细胞上方6. 吸出淋巴细胞上方
2-3mm2-3mm
的血浆。的血浆。
| 7. 吸取淋巴细胞层以及它下面一半的LSM和转移到另外的一个离心管。加入等体积的平衡盐缓冲液至淋巴细胞离心管中，室温离心10分钟，离心速度设定在既不损伤细胞又能沉淀细胞即刻，例如160 - 260 x g（去除LSM和降低血小板的百分比）。 |
7. 吸取淋巴细胞层以及它下面一半的LSM和转移到另外的一个离心管。加入等体积的平衡盐缓冲液至淋巴细胞离心管中，室温离心10分钟，离心速度设定在既不损伤细胞又能沉淀细胞即刻，例如160 - 260 x g（去除LSM和降低血小板的百分比）。 | 7. 吸取淋巴细胞层以及它下面一半的7. 吸取淋巴细胞层以及它下面一半的
LSMLSM
和转移到另外的一个离心管。加入等体积的平衡盐缓冲液至淋巴细胞离心管中，室温离心和转移到另外的一个离心管。加入等体积的平衡盐缓冲液至淋巴细胞离心管中，室温离心
1010
分钟，离心速度设定在既不损伤细胞又能沉淀细胞即刻，例如分钟，离心速度设定在既不损伤细胞又能沉淀细胞即刻，例如
160 - 260 x g160 - 260 x g
（去除（去除
LSMLSM
和降低血小板的百分比）。和降低血小板的百分比）。
| 8. 用平衡盐缓冲液清洗细胞，用适当的培养基重悬细胞。 |
8. 用平衡盐缓冲液清洗细胞，用适当的培养基重悬细胞。 | 8. 用平衡盐缓冲液清洗细胞，用适当的培养基重悬细胞。
| 兔外周血内皮祖细胞分离液试剂盒方法概述： |
兔外周血内皮祖细胞分离液试剂盒方法概述： | 兔外周血内皮祖细胞分离液试剂盒方法概述：
| 分离混合血液白细胞早期的方法，总是伴随红细胞聚集，只轻微影响白细胞。通过离心，红细胞密度增加聚集，同时可以从离心管上部收集白细胞。 |
分离混合血液白细胞早期的方法，总是伴随红细胞聚集，只轻微影响白细胞。通过离心，红细胞密度增加聚集，同时可以从离心管上部收集白细胞。 | 分离混合血液白细胞早期的方法，总是伴随红细胞聚集，只轻微影响白细胞。通过离心，红细胞密度增加聚集，同时可以从离心管上部收集白细胞。
| 通过使用Ficoll 甲泛影钠溶液离心快速分离方法。稀释的血液在Ficoll甲泛影钠溶液中分层，低速短时离心。红细胞和沉降到管底的粒细胞，和单个核细胞（淋巴细胞）和血小板可以从两个分层之间收集。 |
通过使用Ficoll 甲泛影钠溶液离心快速分离方法。稀释的血液在Ficoll甲泛影钠溶液中分层，低速短时离心。红细胞和沉降到管底的粒细胞，和单个核细胞（淋巴细胞）和血小板可以从两个分层之间收集。 | 通过使用Ficoll 甲泛影钠溶液离心快速分离方法。稀释的血液在Ficoll甲泛影钠溶液中分层，低速短时离心。红细胞和沉降到管底的粒细胞，和单个核细胞（淋巴细胞）和血小板可以从两个分层之间收集。
