动物采血

动物取血有多种方式，根据实验需要可以采取少量血液和中量，大量血液，可采用抗凝管和促凝管来接取。

小鼠的取血方法

采血是动物实验中经常应用的样本采集方法之一。小鼠采血方法种类多样，包括但不限于腹主动脉采血、眼眶静脉丛取血、摘眼采血、剪尾采血、心脏采血、断头采血、颈动静脉采血和股动静脉采血等方法。

1、腹主动脉采血

将小鼠麻醉后用组织剪剖开腹部，分离出腹主动脉。一手持一次性注射器，将针头近乎平行（小于30°）刺入腹主动脉，另一手固定针头，一手缓慢抽动注射器，抽取所需量血液。取完血后，用棉球轻压针眼处，快速拔出针头。

2. 眼眶静脉窦采血

小鼠麻醉后，常规抓取小鼠，置于采血台上，左手拇指及食指抓住鼠两耳之间的皮肤使鼠固定，并轻轻压迫颈部两侧，阻碍静脉回流，使眼球充分外突，提示眼眶后静脉丛充血。右手持采血管，将尖端与小鼠面部成45℃的夹角，沿内眦插入内眼角，滑入眼球后方，轻轻向眼底方向刺入，当感到有阻力时即旋转采血管以切开静脉丛，血液即流入采血管中。采血结束后，拔出采血管，放松左手，使用无菌纱布块轻轻压迫眼眶帮助止血。

优点：眼眶后静脉丛采血法方法简单，便于掌握。血流较快，采血量多，能在较短时间内采约0.5mL血。伤口较小，愈合较快。成功率高，死亡率低。

缺点：不能避免组织液的混入，对于血样要求较高的研究应谨慎使用。

3. 剪尾采血

手拇指和食指从背部抓住小鼠颈部皮肤，将小鼠头朝下，小鼠保定后将其尾巴置于50°热水中浸泡数分钟，使尾部血管充盈。擦干尾部，再用剪刀或刀片剪去尾尖1～2mm，用试管接流出的血液，同时自尾根部向尾尖按。取血后用棉球压迫止血并用 6%液体火棉胶涂在伤口处止血。每次采血量0.1ml，可在取血量较少时采用。

4. 摘除眼球采血

用左手拇指、食指和中指抓取小鼠的颈部头皮，小指和无名指固定尾巴。轻压需要摘取的眼部皮肤，使眼球充血突出。用眼科剪剪去小鼠的胡须，防止血从胡须处留下引起溶血。用眼科弯镊夹取眼球并快速摘取，并使血液从眼眶内流入0.5mlEP管中。待小鼠取血完毕后，断颈处死。

5. 心脏采血

小鼠仰卧位固定，剪去胸前区被毛，皮肤消毒后，用左手食指在左侧第3～4肋间触摸到心搏处，右手持带有4~5号针头的注射器，选择心搏最强处穿刺，当刺中心脏时，血液会自动进入注射器。每次采血量0.5～0.6ml。

优点：取血快，血液不易凝集，心区面积大,进针准确性较高,可一针见血,且采血量能满足大量试验需要。

缺点：心脏损伤较大，难以迅速愈合，不利于短期连续采血。

6. 颌下静脉采血

将小鼠固定在左手中，在小鼠头部下颌部准确把握颌下静脉丛血管位置,血管位于下颌骨后方咬肌边缘。酒精棉球擦拭采血部位消毒后，将灭菌注射针头迅速刺入颌下静脉丛血管，刺入深度约为3mm，血液即流出。采血结束，立即用灭菌干棉球压迫止血。

7. 尾静脉采血

将小鼠固定好，将尾巴拉直，用酒精棉球擦拭尾巴或者用热水或者热毛巾焐热尾巴, 使尾部静脉扩张。用左手的食指，中指，无名指及大拇指将小鼠尾巴固定。握住1ml 注射器前面0.1ml处。右手小指搭在拽着鼠尾的左手拇指处斜15°角缓慢进针。适当增加内压看有无回血，若有回血则缓慢抽取所需血量，棉签按压止血。

8. 舌下静脉采血

将小鼠麻醉后仰卧于实验台面上并固定，用眼科弯镊将小鼠舌头拉出，可明显看到小鼠舌下静脉。持才血症与舌面呈10°夹角插入舌下静脉，见有回血缓慢抽取，直至采到所需血量。

9. 隐静脉采血

将小鼠置于固定管或架中，但保持后腿可自由活动，剃除跗部的毛。为使膝盖与踝关节之间的隐静脉更加明显，可以在后腿膝盖以上使用止血带。在近尾侧的皮肤表面可以找到隐静脉。针垂直于皮肤表面扎破血管。不要进针过深，以免刺穿肌肉或碰到骨头。血液会从入针处慢慢流出，用毛细采血管收集，并松开止血带。采血结束后，按压伤口或使用止血剂（如硝酸银）以止血，并将小鼠放回笼内。

10. 尾侧静脉及尾正中动脉采血

将小鼠麻醉后，平躺放置在实验台面上，中指、食指固定小鼠尾部，用刀片轻划小鼠尾侧静脉或尾正中动脉，待血液流出后，用移液枪吸取血液。取血完毕后，棉签按压止血。

11. 断头采血

用左手拇指和食指以背部较紧的捏住小鼠颈部皮肤，并作小鼠头部朝下的姿势。右手用剪刀猛剪鼠颈，约1/2-4/5的颈部剪断，让血自由滴入容器中。

采血时要注意一只成年小鼠的循环血量大约是1.5~2.5ml，大约体重的 6~8%。在对营养状况良好的小鼠进行采血时，单次采血量最多可以到达循环血量的10%，这是避免出现不良反应的最大值。采血之后应该给予温热的等渗溶液补充，可以在2~3个星期内恢复原有的水平。