本制品主要用于免疫沉淀(IP)或免疫共沉淀(Co-IP)，也可以用于抗体的纯化。Protein A Agarose适合于免疫沉淀human IgG1、IgG2、IgG4，mouse IgG2a、IgG2b及rabbit IgG等。
本制品中的重组Protein A可与多数哺乳动物IgG的Fc端特异性结合，分子量为14kDa。该重组Protein A经过基因工程技术的改造，使其成为耐碱结构域，从而实现Protein A的耐碱特性，并仅保留了与IgG Fc端结合相关的氨基酸序列，去除了结合位点以外可能导致非特异性结合的序列，从而可以有效减少非特异性结合。每个Protein A分子可以结合2个IgG分子。
本制品中的Protein A共价连接到4%的高交联度、高流速琼脂糖(cross-linked,4% Agarose,Fast Flow)上。每mL Protein A agarose beads (沉淀物)中共偶联有约20mg的重组Protein A。每mL Protein A agarose beads (沉淀物)可以结合超过30mg human IgG。Protein A脱落值极低，纯化的每mg IgG中脱落的Protein A含量低于15ng。本制品中agarose beads的平均直径为90μm，抗体纯化时的推荐线性流速为50-300cm/h，耐压指数最高为0.3MPa。工作pH值范围为3-12，可耐受0.1-0.5M的NaOH。
背景资料： Protein A是一种发现于金黄色葡萄球菌(Staphylococcus aureus)的细胞壁表面蛋白，分子量为42kDa；Protein G是C型或G型链球菌(Streptococcal bacteria)表达的免疫球蛋白结合蛋白。Protein A和Protein G功能相似，能特异性地与哺乳动物免疫球蛋白(Immunoglobulin,Ig)结合，结合的部位通常为免疫球蛋白的Fc区，但有资料显示Protein A也会和人VH3家族的Fab区结合，而Protein G有时与Fab区也有一定结合。同时，两者对于不同的免疫球蛋白亚类的结合能力有所不同。适当重组改造的Protein A、G与琼脂糖凝胶(agarose)以一定的方式结合，可用于免疫沉淀或抗体的纯化。
产品组成：| 组分 | 2mL | 10mL | 50mL |
| 蛋白A琼脂糖凝胶(用于免疫沉淀) | 2mL | 10mL | 50mL |
| 说明书 | 1份 |
保存：2～8℃，有效期1年，切勿冷冻。
规格说明： 本制品配制在可以直接用于免疫沉淀和抗体纯化的适当溶液中，每mL中共含有0.25mL agarose beads (沉淀物)。如果用于常规的免疫沉淀，每mL本制品(沉淀和溶液为1:3的混合物)可以免疫沉淀50次。
注意事项：1．Protein A Agarose使用前一定要充分重悬，即充分颠倒若干次使混合均匀。
2．本制品含有微量的防腐剂，不会影响常规的免疫沉淀和抗体纯化。但如果后续涉及酶活性测定，使用本制品前宜先用TBS等适当溶液洗涤Protein A agarose beads三次，以充分消除防腐剂可能产生的干扰。
3．从蛋白样品收集开始，所有步骤中蛋白样品都必须在4℃或冰上操作。
使用方法：A．
免疫沉淀(IP)：1．
蛋白样品的准备：a．对于10厘米细胞培养皿中的贴壁细胞，吸除细胞培养液，PBS洗涤一次，然后加入500μL至2mL细胞裂解液裂解细胞。可以使用百奥莱博的WB及IP细胞裂解液(货号：YT038)或各种RIPA裂解液(YT609、YT610、YT611或YT612)等进行细胞的裂解。
b．对于组织样品参考贴壁细胞使用裂解液的比例进行裂解。
c．对于悬浮细胞，离心收集细胞后，PBS洗涤一次，然后参考贴壁细胞的裂解方法进行裂解。
注：详细的裂解方法参考不同裂解液的详细使用方法。对于不同的培养器材，参考10厘米培养皿的裂解液的用量进行裂解。如果裂解获得的蛋白样品浓度过高，可以用裂解液或PBS适当稀释，如果蛋白样品浓度过低，在以后的裂解过程中宜适当减少裂解液的用量。
2．
去除非特异性结合(可选做)：a．取200μL至1mL蛋白样品，蛋白量约为200μg至1mg，加入约1μg和免疫沉淀时使用的IgG种属相同的普通IgG和20μL充分重悬的Protein A Agarose，4℃缓慢摇动30分钟至2小时。
b．2500rpm(约1000g)离心5分钟，取上清用于后续的免疫沉淀。
注：所谓种属相同的IgG是指，例如后续免疫沉淀时用的是小鼠IgG，则在本步骤中可以加入normal mouse IgG，如无normal IgG，可以加入其它不影响后续检测的其它mouse IgG类型的抗体。通过和normal IgG和Protein A Agarose的孵育，可以充分降低非特异性的结合，降低背景。
3．
免疫沉淀：a．加入0.2～2μg用于免疫沉淀的一抗，4℃缓慢摇动过夜。
b．再加入20μL充分重悬的Protein A Agarose，4℃缓慢摇动1～3个小时(为方便后续的洗涤操作，可以把加入充分重悬的Protein A Agarose的量调整为40μL)。
c．2500rpm(约1000g)离心5分钟，或瞬时高速离心，小心吸除上清，注意宁可留下少量上清也不能吸掉Protein A Agarose。
d．用准备蛋白样品时的裂解液或PBS洗涤沉淀5次，裂解液或PBS的用量每次为0.5～1mL。洗涤时离心条件和吸除上清的要求同上面的步骤c。
e．完成最后一次洗涤后，去除上清，加入20～40μL 1×SDS-PAGE电泳上样缓冲液Vortex重悬沉淀，瞬时高速离心把样品离心至管底。
f．100℃或沸水浴处理3～5分钟，取部分或全部样品用于SDS-PAGE电泳，暂时不用的样品可以-20℃保存。
B．
免疫共沉淀： 参考免疫沉淀的方法进行，但免疫共沉淀(Co-IP)通常必须使用未经冻存的新鲜蛋白样品。普通的免疫沉淀虽然可以使用冻存的蛋白样品，但也宜用新鲜的蛋白样品为佳。
C．
抗体纯化：1．
准备工作：a．用0.45微米或0.2微米孔径的滤膜过滤所用的溶液。
b．所有的溶液必须用超声等方法脱气(degas)。
c．选择适当的纯化柱，用适当量的Protein A Agarose装填纯化柱。也可使用百奥莱博的预装柱产品(YTB4351、YTB4371)。
d．用10～20倍柱体积的TBS洗涤并平衡纯化柱，流速可以用恒流泵控制为1mL/min (1mL预装柱)。如无恒流泵，也可以完全依靠重力洗涤并平衡纯化柱。
2．
抗体纯化：a．把含有待纯化的抗体上样到纯化柱。
b．待纯化的抗体过柱后，用10～20倍柱体积的TBS洗涤，以去除未结合和非特异性结合的蛋白。洗涤是否完全可以通过测定280nm的吸光度进行确定。
c．洗涤完后，用10mL 50mM glycine，pH2.7作为洗脱液，洗脱结合的抗体。某些抗体和Protein A的结合能力很强，在pH2.7时洗脱效果不太理想，可以使用50mM glycine，pH1.9作为洗脱液。分管收集洗脱下的抗体，根据蛋白浓度或后续的检测效果确定洗脱峰在哪几个收集管中。
3．
纯化柱的再生：a．用10～20倍柱体积的TBS洗涤纯化柱，使纯化柱达到中性的pH。
b．用TBS来保存再生的纯化柱。
下表是百奥莱博Protein A、Protein G、Protein A+G Agarose产品与人、小鼠、大鼠常见的免疫球蛋白亚类的结合能力及不同物种的总结合能力情况表。
| Species | Ig | Protein A | Protein G | A+G |
| Human | IgG1 | ++++ | ++++ | ++++ |
| IgG2 | ++++ | ++++ | ++++ |
| IgG3 | - | ++++ | ++++ |
| IgG4 | ++++ | ++++ | ++++ |
| IgA | ++ | - | ++ |
| IgD | ++ | - | ++ |
| IgE | ++ | - | ++ |
| IgM | ++ | - | ++ |
| Mouse | IgG1 | + | ++++ | ++++ |
| IgG2a | ++++ | ++++ | ++++ |
| IgG2b | +++ | +++ | +++ |
| IgG3 | ++ | +++ | +++ |
| IgM | +/- | - | +/- |
| Rat | IgG1 | - | + | + |
| IgG2a | - | ++++ | ++++ |
| IgG2b | - | ++ | ++ |
| IgG2c | + | ++ | ++ |
| IgM | +/- | - | +/- |
| Total Ig | Protein A | Protein G | A+G |
| Human | ++++ | ++++ | ++++ |
| Mouse | +++ | +++ | +++ |
| Rat | +/- | ++ | ++ |
| Rabbit | ++++ | +++ | ++++ |
| Goat | - | ++ | ++ |
| Chicken | - | + | + |
| Cow | ++ | ++++ | ++++ |
| Guinea Pig | ++++ | ++ | ++++ |
| Hamster | + | ++ | ++ |
| Horse | ++ | ++++ | ++++ |
| Pig | +++ | +++ | +++ |
| Sheep | +/- | ++ | ++ |
++++:Strong Binding
++~+++:Medium Binding
+:Weak Binding
+/-:Weak or No Binding
-:No Binding
