1．含蛋白稳定剂，提取的蛋白稳定。
2．紫外检测蛋白浓度时，背景干扰低。
3．蛋白酶抑制剂抑制了蛋白的降解，蛋白酶抑制剂配方优化。蛋白酶抑制剂混合物包含6种独立的蛋白酶抑制剂；每一种抑制剂可特异性抑制某一种或几种蛋白酶活性。该混合物优化的组成使其可以抑制几乎所有重要的蛋白酶活性。

1．蛋白酶抑制剂未开盖使用前也可以2～8℃储存。开盖使用后-20℃储存。
2．蛋白酶抑制剂在2～8℃时是固体状态，从冰箱取出后恢复至室温或37℃短时间水浴，变成液体状态后离心至管底部再开盖。
3．试剂拆封后请尽快使用完。

1．旋帽离心管装试剂在开盖前请短暂离心，将盖内壁上的液体甩至管底，避免开盖时液体洒落。
2．实验过程中的所有试剂须预冷；所有器具须放-20℃冰箱预冷。整个过程须保持样品处于低温。
3．蛋白酶抑制剂储存期间溶液如果出现沉淀，不影响使用，溶解后正常使用。
4．可以根据自己实验需要加入其它蛋白酶抑制剂单品。
5．提取液A在使用前需一直置于2～8℃条件，否则下游膜蛋白提取时会导致不容易分层。

1．提取液制备：
每500μL冷提取液A中加入2μL蛋白酶抑制剂混合物，充分混匀后置冰上备用。
注：
● 根据需要处理的样品数量准备蛋白提取液，蛋白酶抑制剂混合物不可以一次全部加入提取液。
● 加过蛋白酶抑制剂的提取液一周内未使用完，再次使用前需要再次加入蛋白酶抑制剂。
● 以下步骤中使用的蛋白提取液为此步配制好的含蛋白酶抑制剂的提取液。
2．取洗净擦干后并去除叶梗和粗叶脉的100～200mg植物组织样本用手术剪刀尽可能剪碎。
3．加入500μL 2～8℃提取液A，用匀浆机/匀浆器充分匀浆。
注：
● 也可液氮研磨处理后加入提取液A
● 没有液氮研磨条件也可以直接加入冷的提取液A在冰上研磨处理。
● 如组织样本很细小，可剪碎后直接加入提取液2～8℃振荡，可以不用匀浆器。
4．将匀浆移入另一个遇冷的干净离心管中在2～8℃条件下振荡30分钟～1小时。
注：
● 此步骤必须在2～8条件下进行。
● 使用振荡器/摇床的较低转速，提取液能轻微晃动即可。
● 如果没有2～8℃持续振荡条件，也可直接置2～8℃冰箱静置1～2小时，中间每隔10分钟涡旋振荡混匀。
5．将提取液在2～8℃低温下12000×g离心5分钟。取上清。
6．在上清中加入5μL提取液B，充分混匀。
7．在37℃水浴10分钟。
8．在37℃ 1000×g离心3分钟。
注：
● 此步骤必须37℃条件下离心。
● 如果离心机不可控温，可以不离心，延长上一步骤水浴时间，至溶液分层清晰即可。或者在室温条件下离心，缩短离心时间至1分钟。
9．此时溶液分为两层，小心移除上层，留下管底部下层大约30～50μL液体。
注：
● 下层为粘稠状液体。
● 下层可能是绿色粘稠状。
10．用50～150μL冷的膜蛋白溶解液C溶解下层溶液，即得膜蛋白样品。
注：
● 膜蛋白比较难溶解，不能很快溶解混匀，可以在加入溶解液后稍微吹打混匀，然后置于4℃冰箱静置至溶解。中途用移液器轻轻吹打混匀一次。静置后取出再次用移液器稍微吹打混匀即可。
● 静置直至管底透明胶状物完全溶解。
11．将上述蛋白提取物定量后分装于-80℃冰箱保存备用或直接用于下游实验。
注：
● 建议用BCA方法进行蛋白定量。相关产品：HR0329。
● 蛋白样品-80℃存放一年没问题。注意不要被蛋白酶水解掉，不要被细菌污染。

1．蛋白浓度低？
膜蛋白丰度比较低，需要尽可能加大细胞上样量。处理部分样本时可能没有裂解完全，导致蛋白浓度低。只要适当延长试剂A的处理时间即可。最好在持续振荡的条件下处理，没有振荡器也可间隔几分钟用吸头吹打混匀。
2．用什么方法定量蛋白？
建议用BCA法。不适合用Bradford法，因为试剂A中含有干扰Bradford法的组份，导致定量不准。如果已经进行过透析处理或者用脱盐柱改换过缓冲体系，则可以用Bradford法定量。
3．提取的蛋白具有活性吗？
本试剂盒不含有离子型去垢剂组份，不破坏蛋白的结构，没有对蛋白质之间原有的相互作用的破坏，蛋白均保持其天然构象和活性。
4．膜蛋白电泳没有条带？
膜蛋白样品通常浓度较低，电泳前一定要进行蛋白定量，以保证电泳是蛋白上样量足够。蛋白样品中含有去垢剂，注意蛋白定量方法的选择，防止不合适的方法导致的蛋白浓度数据异常偏高，从而导致依据错误的蛋白浓度数据上样导致上样量不够。
膜蛋白提取好后，用溶解液充分溶解后，可以超声处理一下，再进行蛋白定量。
蛋白加Loading Buffer后可以不用煮沸，采用50℃保温30分钟。
蛋白Loading Buffer中SDS终浓度含量可以提高至3%～10%。
有些样品的膜蛋白含量太低，可以使用丙酮沉淀膜蛋白，再使膜蛋白溶解于上样缓冲液中，一般可以跑出清晰的蛋白条带。电泳时最好采用低电压低电流电泳。