本试剂盒采用具有独特分离作用的磁珠和独特的缓冲液系统，从干血斑中分离纯化高质量基因组DNA。独特包埋的磁珠，在一定条件下对核酸具有很强的亲和力，而当条件改变时，磁珠释放吸附的核酸，能够达到快速分离纯化核酸的目的。整个过程安全、便捷，提取的基因组DNA片段大，纯度高，质量稳定可靠，尤其适合高通量工作站的自动化提取。使用本试剂盒回收的DNA可适用于各种常规操作，包括酶切、PCR、文库构建、Southern杂交等实验。
储存条件：室温（15～25℃）干燥条件下，可保存12个月，更长时间的保存可置于2～8℃。2～8℃保存条件下，若溶液产生沉淀，使用前应将试剂盒内的溶液在室温放置一段时间，必要时可在37℃水浴中孵育10min，以溶解沉淀。
1．样本处理：向1.5mL离心管中加入3～10片直径为3mm的干血斑样品，加入200～400μL的缓冲液GAS和15μL Proteinase K溶液。
| 干血斑片数 | 缓冲液GAS |
| 3片 | 200μL |
| 5片 | 300μL |
| 10片 | 400μL |
2．涡旋震荡10sec混匀后，放入预热至75℃的恒温震荡器中，900rpm恒温震荡裂解45min。
注意：当样本数目比较大时，可以将缓冲液GAS和Proteinase K按比例预先混合，混合后放置不要超过1h。
3．在上一步样品裂解期间，向新的离心管中加入10μL磁珠悬浮液G，600μL缓冲液GHC（使用前请确认是否已加入异丙醇），抽打混匀或振荡混匀10sec。
注意：当样本数目比较大时，可以将磁珠悬浮液G，缓冲液GHC按比例预先混合并抽打或振荡混匀20sec，混合后每个样本用量为610μL。
4．样品裂解后，将步骤2中离心管短暂离心后室温放置2min，并将裂解液上清转移至步骤3中的离心管，然后将其放入恒温振荡器，室温900rpm震荡10min。
注意：尽量不要吸到滤纸片，否则会影响到磁珠与核酸结合，导致得率降低。
5．将离心管放置于磁力架上静置1min，待磁珠完全吸附时小心去除液体。
6．将离心管从磁力架上取下，加入900μL去蛋白液PD，抽打混匀或振荡混匀2min。
7．将离心管放置于磁力架上静置1min，待磁珠完全吸附时小心去除液体。
8．将离心管从磁力架上取下，加入900μL去蛋白液PD，抽打混匀或振荡混匀2min。
9．将离心管放置于磁力架上静置1min，待磁珠完全吸附后小心去除液体。
10．将离心管从磁力架上取下，加入900μL漂洗液PWB（使用前请确认是否已加入无水乙醇），抽打混匀或振荡混匀2min。
11．将离心管放置于磁力架上静置1min，待磁珠完全吸附后小心去除液体。将离心管放置于磁力架上静置30sec，磁珠完全吸附后，小心吸去液体。
12．将离心管于磁力架上，室温晾干10～15min。
注意：乙醇残留会抑制后续的酶反应，所以晾干时要确保乙醇挥发干净。但也不要干燥太长时间，以免难以洗脱DNA。
13．加入30～50μL洗脱缓冲液TBC或去离子水，抽打混匀或振荡混匀，置于56℃，孵育5～10min。
14．将离心管放置于磁力架上静置2min，待磁珠完全吸附时小心将DNA溶液转移至新的离心管，并于适当条件保存。
