本试剂盒采用可以特异性结合DNA的离心吸附柱和独特的缓冲液系统，能提取多种细胞/组织中的基因组DNA。离心吸附柱可以高效、专一吸附DNA，可最大限度去除杂质蛋白及细胞中其他有机化合物。提取的基因组DNA片段大，纯度高，质量稳定可靠。
1．处理材料：
a．培养细胞：贴壁培养的细胞应先处理为细胞悬液（如用PBS缓冲液或类似缓冲液），10000g离心1分钟，倒尽上清，加入200μL缓冲液GA，振荡至彻底悬浮。
b．组织：取约30mg动物组织（脾组织用量应少于10mg）加入到事先盛有200μL缓冲液GA的1.5mL离心管中，用研磨杵彻底将组织研碎。
2．加入20μL蛋白酶K (20mg/mL)溶液。
a．提取细胞基因组时，加入蛋白酶K混匀后，55℃放置5～10分钟。
b．提取组织基因组时，加入蛋白酶K混匀后，在55℃放置，直至组织溶解。
·不同组织裂解时间不同，通常需1～3小时即可完成（鼠尾需要消化过夜），期间间歇颠倒混匀样品。
3．加入10μL RNaseA（10mg/mL）溶液，混匀后室温放置2分钟。
4．加入220μL缓冲液GB，充分颠倒混匀，70℃放置10分钟，溶液应变清亮，简短离心以去除管盖内壁的水珠。
·加入缓冲液GB时可能会产生白色沉淀，一般70℃放置一段时间后会消失。如溶液未变清亮，说明细胞裂解不彻底，会影响DNA的纯度和得率，而且可能导致步骤6中离心柱堵塞。
5．加入220μL无水乙醇，颠倒混匀，简短离心以去除管盖内壁的水珠。
·加入乙醇后会产生絮状沉淀，可用枪头反复抽打1～2次将沉淀弄碎后再上柱。如果絮状物未做处理，容易导致步骤6中离心柱的堵塞。
6．将上一步所得溶液和絮状沉淀都加入一个吸附柱CG中（吸附柱放入收集管中），11000g离心2分钟，倒掉废液，吸附柱CG放回收集管中。
·如果出现吸附柱堵塞现象，可将离心时间延长到5分钟。
7．向吸附柱CG中加入500μL去蛋白液GD（
使用前请先检查是否已加入无水乙醇），11000g离心1分钟，倒掉废液，吸附柱CG放入收集管中。
8．向吸附柱CG中加入700μL漂洗液PW（
使用前请先检查是否已加入无水乙醇），11000g离心1分钟，倒掉废液，吸附柱CG放入收集管中。
9．向吸附柱CG中加入500μL漂洗液PW（
使用前请先检查是否已加入无水乙醇），11000g离心1分钟，倒掉废液。
10．将吸附柱CG放回废液收集管中，11000g离心2分钟。
·此步骤非常重要，目的是将吸附柱中残余的漂洗液去除。漂洗液中乙醇的残留会影响后续的酶反应（酶切、PCR等）实验。
11．将吸附柱CG转入一个干净的离心管中，向吸附膜的中间部位悬空滴加100μL经70℃水浴预热的洗脱缓冲液EB，室温放置2分钟，11000g离心2分钟。
·洗脱缓冲液体积最好不少于100μL，体积过小影响回收效率。
·洗脱液的pH值对于洗脱效率有很大影响。若用水做洗脱液应保证其pH值在7.0～8.5范围内，pH值低于7.0会降低洗脱效率。
12．DNA产物-20℃保存。
