本磁珠基于SPRI (Solid Phase Reverse Immobilization)原理，可广泛应用于NGS (Next Generation Sequencing)文库构建中DNA纯化和特定长度DNA片段的分选。BalbNGS DNA Clean Beads适用于不同品牌的DNA、RNA建库试剂盒和文献报道的建库流程，文库的产量、大小分布与AMPure XP Beads高度一致。
适用范围： 高通量测序文库构建中DNA片段的分选及纯化，PCR反应体系、酶切及连接反应体系中DNA的纯化，游离核酸筛选，核酸提取过程中小片段DNA的去除等。
产品特点：1．高效：DNA片段纯化得率高；
2．简便：无需切胶，自由选择所分选DNA片段的长度；
3．兼容：兼容手工操作或自动化工作站的高通量操作。
产品组成：| 组分 | 5mL | 60mL |
| BalbNGS DNA Clean Beads | 5mL | 60mL |
| 说明书 | 1份 |
保存：2～8℃
质量控制： 试剂盒中提供的所有试剂都经过严格的质量控制和功能验证，最大程度上保证文库质量的稳定性和重复性。
操作流程：A．
DNA纯化操作步骤：1．准备工作：将磁珠由冰箱中取出，室温平衡至少30min。配制80%乙醇；
2．涡旋振荡或充分颠倒磁珠以保证充分混匀，吸取一定体积（参考表1）磁珠液加入DNA样品中，使用移液器轻轻吸打10次充分混匀；
3．室温孵育10min，使DNA结合到磁珠上；
4．将样品短暂离心并置于磁力架中分离磁珠和液体，待溶液澄清后（约5min），小心移除上清；
5．保持样品始终置于磁力架中，加入200μL新鲜配制的80%乙醇漂洗磁珠，室温孵育30sec后，小心移除上清；
6．重复步骤5；
7．保持样品始终置于磁力架中，开盖干燥5min～10min；
8．将样品从磁力架中取出，加入适量无核酸酶水，使用移液器轻轻吹打至充分混匀，室温静置5min；
9．在磁力架上静置5min待溶液澄清后，小心吸取上清至一个新的无核酸酶管中。
B．
DNA分选操作步骤：1．准备工作：将磁珠由冰箱中取出，室温平衡约30min。
配制80%乙醇；
2．请涡旋振荡或充分颠倒磁珠以保证混匀，吸取适量体积磁珠液（参考表2，第一轮分选）加入到纯化后的DNA处理样品中，使用移液器轻轻吸打10次充分混匀；
3．室温孵育10min，使DNA结合到磁珠上；
4．将样品置于磁力架上，待溶液澄清后（约5min），小心吸取上清至一个新的无核酸酶管中，丢弃磁珠；
5．加入适量磁珠液（参考表2，第二轮分选），使用移液器吸打10次充分混匀；
6．室温孵育10min，使DNA结合到磁珠上；
7．将样品置于磁力架上，待溶液澄清后(约5min)，小心移除上清；
8．保持样品始终处于磁力架上，加入200μL新鲜配制的80%乙醇漂洗磁珠，室温孵育30 s，小心移除上清；
9．重复步骤8一次；
10．保持样品始终处于磁力架上，室温下开盖干燥磁珠约5～10min；
11．将样品从磁力架上取出，加入适量无核酸酶水，涡旋振荡或使用移液器吹打充分混匀，室温静置2min；
12．在磁力架上静置5min，待溶液澄清后，小心吸取上清至一个新的无核酸酶管中。
| 纯化后DNA片段大小 | 纯化磁珠用量(磁珠体积用量：样品体积) |
| ≥1Kb | 0.5× |
| ≥400bp | 1.0× |
| ≥300bp | 1.2× |
| ≥200bp | 1.5× |
| ≥100bp | 2.2～3.0× |
表2.DNA片段分选参考条件 | 片段平均长度 | 150～200bp | 200～250bp | 250～300bp | 300～350bp | 350～400bp |
| 第一轮用量 | 1.0× | 0.9× | 0.8× | 0.7× | 0.7× |
| 第二轮用量 | 0.3× | 0.2× | 0.2× | 0.2× | 0.1× |
| 片段平均长度 | 400～450bp | 450～500bp | 500～550bp | 550～600bp | 600～650bp |
| 第一轮用量 | 0.6× | 0.6× | 0.55× | 0.5× | 0.45× |
| 第二轮用量 | 0.15× | 0.1× | 0.1× | 0.15× | 0.15× |
举例：“0.7×”代表磁珠与PCR产物的体积比，若PCR产物体积为50μL，则第一轮磁珠用量0.7×50μL=35μL，第二轮磁珠用量为0.2×50μL=10μL，具体PCR产物体积请以使用的建库试剂盒为准。
注意：由于PCR过程中水分蒸发导致PCR产物体积小于原有体积，请务必用无核酸酶水补齐，否则会导致分选长度和预期不一致。
